클로닝 방법 비교: 언제 무엇을 쓸까

약 9분 분량 · 업데이트 2026-09-26

클로닝은 결국 insert를 vector에 원하는 방향·원하는 자리로 이어 붙이는 일입니다. 방법마다 필요한 준비물과 남는 흔적 서열이 달라서, 가진 vector와 insert에 따라 고르면 됩니다.

1. 한눈에 비교

방법원리흔적 서열여러 조각장점주의
제한효소 + ligation같은 효소로 자른 끝끼리 ligase로 연결효소 자리 남음어려움시약이 싸고 익숙함insert 안에 같은 자리가 없어야 함
Gibson · HiFi겹치는 끝(20–30 nt)을 효소 혼합물이 이어 붙임없음 (원하는 대로)쉬움 (2–6조각)자리 제약 없음짧은 조각(<200 bp)·반복 서열은 까다로움
In-Fusion15 nt 겹침으로 연결없음가능빠르고 간단전용 키트 필요
Golden GateType IIS 효소(BsaI 등)가 자리 밖을 잘라 4 nt 이음새로 연결4 nt 이음새만매우 쉬움 (10조각 이상)한 튜브, 순서·방향 고정insert 안의 BsaI 자리 제거 필요
TA · TOPOPCR 산물의 A 꼬리를 T vector에 연결vector 서열불가primer 설계 불필요, 매우 빠름방향이 무작위
Gatewayatt 자리 사이 재조합으로 옮김att 자리(≈25 nt)제한적여러 발현 vector로 쉽게 옮김entry clone 먼저 필요

2. 어떻게 고를까

3. 제한효소 클로닝 순서와 숫자

  1. insert를 제한효소 꼬리 primer로 PCR (여분 염기 4–6개 + 자리)
  2. vector와 insert를 같은 두 효소로 자르기 → vector는 dephosphorylation(선택)으로 자기끼리 붙는 것 줄이기
  3. 젤 정제로 자른 조각 분리
  4. ligation: vector 50 ng, insert는 vector : insert = 1 : 3 몰 비율 (insert ng = vector ng × insert bp ÷ vector bp × 3)
  5. 형질전환 → 항생제 plate → 콜로니 확인

몰 비율 계산은 시약 계산기, 효소 자리 확인과 primer는 클로닝 도우미로 할 수 있습니다.

4. 클론 확인 — 세 단계

방법무엇을 알 수 있나
Colony PCRinsert가 들어갔는지 (vector primer + insert primer를 쓰면 방향도)
제한효소 확인(diagnostic digest)전체 크기와 방향 — 조각 크기가 예상과 같은지
Sanger 시퀀싱서열 한 글자까지 — 돌연변이·frame 확인 (최종 확인은 반드시)

5. 흔한 실패 원인

클로닝 도우미에서 제한효소 지도와 가상 절단 젤을 보고, 제한효소 꼬리 primer나 Gibson 겹침 primer를 바로 만들 수 있습니다.

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